01.技術(shù)簡述
細(xì)胞游離DNA（cell-free DNA，cfDNA）是指在生物體的體液中（如血漿、尿液、腦脊液等）自由存在的、非細(xì)胞內(nèi)的DNA片段。這些DNA片段通常來源于細(xì)胞凋亡（程序性死亡）或壞死（細(xì)胞損傷或死亡后釋放），可以被釋放到循環(huán)系統(tǒng)中，并在體液中被檢測到。cfDNA研究和應(yīng)用是精準(zhǔn)醫(yī)療和液體活檢領(lǐng)域的重要方向之一。
 

02.技術(shù)優(yōu)勢(shì)

腦脊液樣本：通常作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病研究的樣本選擇。

尿液樣本：常用于泌尿系統(tǒng)癌癥如膀胱癌、腎癌等腫瘤標(biāo)志物研究及移植排異監(jiān)測等cfDNA 研究。

血漿樣本要求
樣本采集：靜脈抽血5-10ml，收集到EDTA 抗凝血管中，上下顛倒抗凝采血管，輕輕混勻，全血2-8℃保存不超過4h；如用Streck 采血管收集全血，則5-8℃保存不超過72h。

分離血漿：采血后建議馬上分離血漿，提取cfDNA，-20℃保存；如不能馬上提取，常規(guī)采血管采血后必須4h 內(nèi)（最好30min-1h 內(nèi)）完成血漿分離，-80℃保存。

樣本運(yùn)輸：大體積干冰運(yùn)輸。

04.研究案例
案例1：ctDNA全基因組亞硫酸鹽測序分析，用于癌癥檢測和分子分類
發(fā)表期刊：Clinical and Translational Medicine
影響因子：8.554/1區(qū)
方法：ctDNA-WGBS

此研究納入三組乳腺癌（BC）患者（BC組n=123；健康對(duì)照組n=40），利用ctDNA-WGBS技術(shù)檢測從200μL血漿中獲得的微量ctDNA（輸入量約1ng）進(jìn)行測序分析。研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)，在多中心患者隊(duì)列中，在早期和晚期BC階段中對(duì)于15個(gè)ctDNA甲基化標(biāo)志物的診斷特征表現(xiàn)出高準(zhǔn)確性。同時(shí)可以在不同的癌癥類型（包括肝細(xì)胞癌和肺癌）中可以很好區(qū)分雌激素受體狀態(tài)的ctDNA甲基化特征。
 

圖：ctDNA甲基化可以作為乳腺癌亞型分類和預(yù)測ER狀態(tài)的潛在生物標(biāo)志物[3]

案例2：MeDIP-seq結(jié)合機(jī)器學(xué)習(xí)方法，為多癌種生物標(biāo)志物檢測提供新思路
期刊：Nature Communications
影響因子：IF 14.7 / 1區(qū)
技術(shù)平臺(tái)：cfMeDIP-seq等
此研究通過結(jié)合cfMeDIP-seq技術(shù)和機(jī)器學(xué)習(xí)，分析了215例樣本的cfDNA甲基化組，包括患有肝癌或腦癌的個(gè)體樣本（實(shí)驗(yàn)組）以及無癌癥個(gè)體樣本（對(duì)照組）。利用DMRs、DhMRs或DMRs+DhMRs訓(xùn)練機(jī)器學(xué)習(xí)模型，結(jié)果發(fā)現(xiàn)DMRs+DhMRs聯(lián)合模型在區(qū)分對(duì)照組、肝癌和腦癌方面表現(xiàn)出更優(yōu)性能，研究支持同時(shí)利用DMRs和DhMRs進(jìn)行多癌種檢測的潛力。
 

圖：用于分析血漿cfDNA甲基化的單鏈cfDNA甲基化DNA免疫沉淀測序方法[4]

案例3：ACE-seq無需亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化精準(zhǔn)區(qū)分甲基化和羥甲基化標(biāo)記
此研究建立一種利用DNA脫氨酶（APOBEC3A）實(shí)現(xiàn)的非破壞性的、低起始DNA量的鑒定5hmC技術(shù)（ACE-seq）。與傳統(tǒng)亞硫酸鹽測序（BS-Seq）不同，ACE-seq不依賴于亞硫酸鹽處理，而是通過酶促脫氨反應(yīng)來區(qū)分未修飾的胞嘧啶（C）和5-甲基胞嘧啶（5mC），同時(shí)保護(hù)5hmC不被轉(zhuǎn)化為尿嘧啶。這種方法允許對(duì)cfDNA中的5hmC進(jìn)行精確的定位和定量分析。
 

圖：幾類基因組元件的 5hmC（藍(lán)色）和 5mC（紅色）的修飾水平[2]

案例4：cfhMeDIP-seq對(duì)5-羥甲基胞嘧啶（5hmC）特征進(jìn)行檢測以預(yù)測早期胰腺癌
此研究利用cfDNA hMeDIP-seq對(duì)胰腺導(dǎo)管腺癌（PDAC）隊(duì)列（n=64）與非癌癥隊(duì)列（n=243）的5hmC變化進(jìn)行比較分析。在數(shù)千個(gè)基因中鑒定差異性羥甲基化，結(jié)果表明胰腺發(fā)育或功能相關(guān)基因和癌癥發(fā)病機(jī)制相關(guān)基因差異最為顯著。在PDAC隊(duì)列的cfDNA羥甲基化組中，與KRAS激活和TP53失活在PDAC腫瘤中常見基因調(diào)控失調(diào)相關(guān)的基因表現(xiàn)出差異性富集，表明5hmC變化在早期疾病階段能實(shí)現(xiàn)PDAC分類。
 

圖：與非癌癥患者cfDNA相比，PDAC cfDNA中的5hmC占位差異分析[5]

案例5：cfChIP-seq利用cfDNA片段分析組蛋白修飾，揭示H3K27ac水平與cfDNA片段大小有關(guān)
此研究利用cfChIP-seq檢測技術(shù)從18個(gè)健康對(duì)照樣本中獲得H3K27ac信號(hào)，并結(jié)合配對(duì)樣本分析循環(huán)核小體的cfDNA片段大小模式和H3K27ac信號(hào)之間的相關(guān)性。隨后構(gòu)建線性回歸模型，可根據(jù)cfDNA片段大小模式推斷血漿中H3K27ac水平（H3K27ac相關(guān)信號(hào)）。分析發(fā)現(xiàn)H3K27ac相關(guān)信號(hào)與cfChIP-seq測定的H3K27ac相關(guān)信號(hào)一致。
 

圖：cfChIP-seq揭示H3K27ac水平與cfDNA片段大小之間的關(guān)系[7]

案例6：cfDNA低覆蓋度WGS揭示腫瘤患者的全基因組突變特征
此研究對(duì)215名患者和227名健康人群的血漿進(jìn)行全基因組測序（WGS），鑒定出病理性和生理性突變特征。
 

圖：多種癌癥類型的血漿基因突變特征檢測[6]

05.參考文獻(xiàn)
① Shen SY, Burgener JM, Bratman SV, De Carvalho DD. Preparation of cfMeDIP-seq libraries for methylome profiling of plasma cell-free DNA. Nat Protoc. 2019 Oct;14(10):2749-2780. pii: 10.1038/s41596-019-0202-2. doi: 10.1038/s41596-019-0202-2. PubMed PMID: 31471598.

② Schutsky EK, et al.Nondestructive, base-resolution sequencing of 5-hydroxymethylcytosine using a DNA deaminase. Nat Biotechnol. 2018 Oct 8. pii: nbt.4204. doi: 10.1038/nbt.4204. PubMed PMID: 30295673.

③ Gao Y, et al. Whole-genome bisulfite sequencing analysis of circulating tumour DNA for the detection and molecular classification of cancer. Clin Transl Med. 2022 Aug;12(8):e1014. doi: 10.1002/ctm2.1014. PubMed PMID: 35998020.

④ Hua X, et al. Tumor detection by analysis of both symmetric- and hemi-methylation of plasma cell-free DNA. Nat Commun. 2024 Jul 20;15(1):6113. pii: 10.1038/s41467-024-50471-1. doi: 10.1038/s41467-024-50471-1. PubMed PMID: 39030196.

⑤ Guler GD,et al. Detection of early stage pancreatic cancer using 5-hydroxymethylcytosine signatures in circulating cell free DNA. Nat Commun. 2020 Oct 19;11(1):5270. pii: 10.1038/s41467-020-18965-w. doi: 10.1038/s41467-020-18965-w. PubMed PMID: 33077732.

⑥ Wan JCM, et al. Genome-wide mutational signatures in low-coverage whole genome sequencing of cell-free DNA. Nat Commun. 2022 Aug 23;13(1):4953. pii: 10.1038/s41467-022-32598-1. doi: 10.1038/s41467-022-32598-1. PubMed PMID: 35999207.

⑦ Bai J, et al. Histone modifications of circulating nucleosomes are associated with changes in cell-free DNA fragmentation patterns. Proc Natl Acad Sci U S A. 2024 Oct 15;121(42):e2404058121. doi: 10.1073/pnas.2404058121. PubMed PMID: 39382996.