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PCR反應(yīng)程序優(yōu)化的方法總結(jié)

瀏覽次數(shù):441 發(fā)布日期:2025-5-23  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

一個成熟、穩(wěn)定的PCR反應(yīng)成形之前必會經(jīng)歷許多的坎坷,優(yōu)質(zhì)模板的獲取、高特異性引物的設(shè)計(jì)、反應(yīng)體系各組分的優(yōu)化、反應(yīng)程序的優(yōu)化等等。今天我們來聊聊反應(yīng)程序優(yōu)化的那些事兒。

首先,優(yōu)質(zhì)的模板是PCR成敗的前提,沒有優(yōu)質(zhì)的模板后續(xù)工作做得再好也是巧婦難為無米之炊。優(yōu)質(zhì)的模板除了濃度和純度外,模板的完整性也是一個關(guān)鍵因素。不能僅以純度(260/280、260/230的比值)來衡量模板的優(yōu)劣,一定要跑個膠確認(rèn)下。

例如石蠟切片核酸的提取,即使比值堪稱完美,沒有膠圖參考的情況下也不建議直接進(jìn)行后續(xù)的擴(kuò)增實(shí)驗(yàn),因?yàn)闃O易翻車。解交聯(lián)后核酸會片段化,一不注意都碎成了幾十bp的長度……那之前檢測的濃度和純度就成了擺設(shè),一點(diǎn)意義也無。

再說引物的特異性,這方面常見的是去NCBI檢索現(xiàn)成的引物或者依靠引物設(shè)計(jì)軟件自行設(shè)計(jì)。將設(shè)計(jì)好的引物序列去基因庫比對一下,沒有重合就可以找合成公司去合成了(常用Primer 5設(shè)計(jì)引物,Oligo 7對引物進(jìn)行評價。評分高的引物特異性高、引物二聚體的概率也低)。

反應(yīng)體系優(yōu)化這里簡單介紹一下鎂離子濃度的優(yōu)化。dNTP可以結(jié)合鎂離子,被結(jié)合的鎂離子無法維持Taq酶的活性,所以鎂離子的摩爾濃度一定要比dNTP的總濃度要高。但是過高的鎂離子濃度又會增加Taq酶的錯配率,所以鎂離子的濃度是關(guān)乎擴(kuò)增效果的一個重要參數(shù)。

反應(yīng)程序則多集中于優(yōu)化退火溫度。退火溫度常設(shè)置在引物對的Tm值附近,若想得到較高的保真率,退火溫度就略高于Tm值;若想得到較高的產(chǎn)物,退火溫度就略低于Tm值。教材中常用的55℃退火72℃延伸,便是因?yàn)?5℃處于大多引物的Tm值附近(或略低),這一設(shè)定也許不是最適的退火溫度但一般能擴(kuò)增出產(chǎn)物(72℃是Taq酶最適溫度)。

最后聊一下反應(yīng)程序優(yōu)化中經(jīng)常被忽略的一個環(huán)節(jié)-變溫速率。變溫速率,尤其是變性-退火這一環(huán)節(jié)的變溫速率尤其重要。相對緩慢的變溫速率,有助于堿基嚴(yán)格按照堿基互補(bǔ)配對原則進(jìn)行反應(yīng),這一點(diǎn)不論是從HRM實(shí)驗(yàn)中非沃森-克里克結(jié)構(gòu)的形成及消除還是DNA oligo的退火實(shí)驗(yàn)都有體現(xiàn),甚至可以說是極端體現(xiàn)。當(dāng)我們實(shí)驗(yàn)時遇到了熔解曲線主峰前有雜峰、測序結(jié)果套峰等不良結(jié)果時不妨把退火的降溫速率下調(diào)一些,緩一緩,或許能看到另一番風(fēng)景。

最后的最后分享兩張圖:模板,反應(yīng)程序、反應(yīng)體系一致,只調(diào)試了退火降溫速率。

圖1:變溫速率2℃/sec

圖2:變溫速率4℃/sec

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