細胞培養的本質是細胞克隆技術。原理就是盡可能給細胞提供類似于體內的環境，在無菌條件下，給予適當的溫度和酸堿度以及細胞生長繁殖所必要的營養條件，使其能在體外維持正常的生長繁殖，并保持其結構和功能的技術。

 

　　細胞培養技術的應用十分廣泛，基礎醫學研究，抗體制備，新藥篩選，基因工程等等都需要用到細胞培養技術。

 

　　但在日常的細胞實驗中，實驗者經常會遇到一些問題，今天我們就這些常見的問題給出相應的建議，希望對小伙伴們有所幫助。

 

　　貼壁細胞如何高效傳代？

 

　　貼壁生長的細胞，在培養瓶或者培養皿長至單層鋪滿的狀態后后，空間已基本上飽和，細胞生長、增殖受阻，為使其繼續擴增或生長，需要進行傳代（再培養）處理。同時，傳代培養也可用于細胞種的保存。不僅如此，各種細胞實驗也是以高效的細胞傳代為基礎的。

 

　　懸浮型細胞直接分瓶就可以，而貼壁細胞則需經消化等處理后才能分瓶。

 

　　一般使用胰蛋白酶，將貼壁細胞消化成成單個細胞，也可加入EDTA提高消化能力（EDTA是一種二價離子的螯合劑，能抑制細胞膜上的Ca2+和Mg2+）。

 

　　常用的細胞消化液一般含有0.25%(w/v)的胰酶和0.03%(w/v)EDTA。

 

　　實驗時，先用吸去細胞培養上清，用PBS清洗細胞，棄掉洗滌液，重新加入少量的胰酶-EDTA消化液(根據培養皿的大小不同，一般2-5ml消化液即可，以剛好鋪滿整個皿底為原則)，觀察細胞直到細胞變圓脫離瓶壁，此過程一般需要3-5分鐘，為了避免細胞成團，消化細胞的過程中不要拍打細胞瓶。對于特別難消化的細胞，可以加入胰酶EDTA消化液后把細胞置于37°C促進消化，細胞脫離瓶壁后，立刻加入含有血清的完全培養基中止消化。

 

　　800-1000rpm，離心5分鐘，然后棄去中止用的培養基，加入適合的新的培養基輕輕混勻細胞，移入到新的培養瓶。傳代的比例視細胞類型而定。胰蛋白酶會對某些細胞的細胞膜產生損傷，對于這種類型的細胞，可用細胞刮輕輕刮下細胞，加入適量的培養基，輕輕吹打混勻細胞，然后進行傳代培養。