FLIPRTETRA系統檢測Gi-和Gs偶聯GPCR介導的第二信使cAMP信號變化
簡介
在這篇應用文獻中我們展示了基于Promega公司 GloSensor. cAMP 實驗中的修改后的發光螢火蟲熒光素酶的應用。在FLIPR.Tetra高通量篩選系統進行cAMP水平的檢測以保證在動力學模式下精確檢測Gi和Gs偶聯的GPCR活性。通過這樣的實驗，基于對細胞內相關第二信使cAMP濃度變化的檢測可以對GPCR亞型進行評價。Gi和Gs偶聯GPCR的第二信使信號活性的檢測傳統方法一般采用放射性結合或需要細胞裂解的終點法cAMP實驗方法。這些類型的實驗都是檢測一個單獨時間點下的細胞反應和活性，不能提供動力學信息。另一種選擇時采用強制耦合到GÞ16的Gs-和Gi- GPCRs，檢測受體激活后鈣離子流引發的熒光信號檢測。然而，這種方法由于不是直接的反應cAMP通路生物相關性信號變化，只能作為第二位選擇。我們展示了穩定表達Glosensor質粒的CHO-K1和HEK-293細胞系中的內源性受體活性。另外，在瞬時轉染了Glosensor質粒的細胞系中檢測了穩定轉染的Gs-和Gi-偶聯受體活性。結合Glosensor cAMP方法，FLIPRTetra系統建立了一個靈活的完整解決方案用于GPCR主要亞型的動力學篩選。
如圖1所示，Glosensor cAMP檢測實驗主要通過cAMP結合域融合到野生型的螢火蟲熒光素酶的N-和C-末端來實現。cAMP缺乏時，基因修飾過的含有cAMP結合域的熒光素酶處于未激活狀態。一旦結合了cAMP后，cAMP結合域構象發生變化處于激活狀態引起化學發光信號增加，從而被FLIPRTetra系統檢測到。更多關于Glosensor cAMP實驗的信息可參考技術手冊（Cat# TM076, Promega）。
結合質粒瞬時轉染或穩定轉染的靈活的Gs-和Gi-偶聯的GPCR實驗設計是可行的。四種可供選擇的來自Promega的細胞系或靶標細胞系見下：
靈活的GloSensor cAMP 實驗設計
Stable receptor and stable GloSensor cAMP assay
Transient receptor and stable GloSensor cAMP assay
Stable receptor and transient GloSensor cAMP assay
Transient receptor and transient GloSensor cAMP assay
FLIPR Tetra 系統：
• 超靈敏ICCD相機既可以對化學發光檢測，同時也可以檢測熒光信號
• 活細胞中動態的cAMP冷光信號檢測通過FLIPRTetra系統的超靈敏ICCD相機來實現
• 實驗通量: 96-, 384-和1536-孔記錄板規格，可很方便與自動化設備整合
cAMP細胞系和質粒
• GloSensor cAMP HEK 293 stable cell line (Promega Corporation, Cat. #E1261)
• GloSensor cAMP 23F CHO K1-stable cell line (Promega R&D)
• Rat Y2R/GloSensor cAMP 23F CHO-K1 double stable cell line (Promega R&D)
• GloSensor cAMP assay plasmid pGlosensor-22FcAMP (Promega, Cat. #E2301)
• Dopamine D4 stable HEK 293T cell line (Multispan Inc., Cat. #C1338)
細胞培養試劑
. HEK 293 cell growth medium: 90% DMEM (Life Technologies, Cat. #11995- 065), 10% FBS (Hyclone, Cat. #SH.30071), 200 μg/mL hygromycin B (Sigma, Cat. #H3274)
. GloSensor cAMP-23F CHO-K1 cell growth medium: 90% F-12 Medium (Life Technologies, Cat. #11765), 10% FBS, and 200 mg/mL hygromycin B)
. Glo Sensor cAMP-23F/Y2R CHO-K1 double stable cell growth medium: 90% F-12 Medium (Life Technologies, Cat. #11765), 10% FBS, and 200 μg/mL hy- gromycin B), and 500 μg/mL G418 (Life Technologies, Cat. #10131027)
實驗試劑
• Plating medium: 90% CO2-independent medium (Life Technologies, Cat. #18045), 10% FBS
• HEPES buffer: Re-suspend HEPES in deionized water to 10 mM; adjust pH to7.5 using KOH
• GloSensor cAMP Reagent stock solution: Re-suspend 250 mg GloSensor cAMP Reagent (Promega, Cat. #E1291) in 8.17 mL of HEPES buffer; store at -70°C in single-use aliquots
• 平衡溶液：種植液（見上）和2%或5% GloSensor cAMP 試劑；需根據具體實驗情況進行優化 • 化合物：(-)異丙腎上腺素(Sigma, Cat. #I6504); 羥甲叔丁腎上腺素(Sigma, Cat. #S8260); 普萘洛爾(Sigma, Cat. #P0884); 吲哚洛爾(Sigma, Cat. #P0778); 阿普洛爾(Sigma, Cat. #A8676); 多巴胺 (Sigma, Cat. # H8502). Peptide YY(3-36), (Tocris Cat. #1618); 所有化合物母液均配置為10 mM ，添加HBSS + 20 mM HEPES做進一步的稀釋
方法
穩定的GloSensor cAMP 細胞系實驗方法
Step 1. 細胞在384孔黑壁底透的細胞板（Corning, Cat. #3712）中過夜培養。
Step 2. 實驗前2小時，去除培養基并在37°C和5% CO2條件下培養細胞1小時，然后每孔加入含Glosensor cAMP試劑的平衡溶液30 μL室溫下在放置1小時。
• HEK細胞孵育在含2% Glosensor cAMP試劑的平衡溶液中
• CHO-K1 細胞孵育在5% Glosensor cAMP試劑中
Step 3. 動力學檢測過程中通過FLIPRTetra系統添加5X化合物
Step 4. 每10秒或30秒曝光一次，持續10-25分鐘
Step 5. 一般來說，由于較低的動力學變化Gi-偶聯的受體實驗需要更長的時間。FLIPR參數設置見表1.
Step 6. 數據結果從FLIPR的ScreenWorks®軟件輸出到Graphpad Prism 5 進行分析
GloSensor cAMP 瞬時轉染方法用于穩定表達GPCR受體的細胞和內源性受體的細胞
Step 1. 在培養瓶中不加抗生素條件下37°C和5% CO2過夜培養細胞，密度可達到70-80%。
Step 2. 在Opti-Mem-無血清培養基中稀釋pGloSensor cAMP質粒至20 ng/mL，使得step 4中每毫升細胞體系中含1-μg DNA/mL (Life Technologies, Cat. #31985)。
Step 3. 添加Fugene HD 轉染試劑混合物（Roche, Cat. #0409705001），比例是3:1每微克DNA并輕柔混合后室溫下孵育15分鐘。試劑(μL) 與DNA (μG)的比例是3:1。
Step 4. 添加DNA復合物至含0.48 million per mL細胞的離心管中(種植時12000 cells/25 μL/well for HEK-D4; 取決于細胞).
Step 5. 根據不同的細胞系，在每孔25微升體系中種植8000–12000個細胞，并在37°C和5% CO2條件下培養2天。
Step 6. 實驗當天，輕柔的去除培養基并添加30μL 2–6% f/v GloSensor cAMP試劑至平衡液中。
Step 7. 37°C孵育1小時并在室溫下放置1小時。
Step 8. 參照表1中FLIPR系統的參數設置，在動力學檢測過程中添加6X 化合物。
表 1: FLIPR Tetra System Setup Parameters
結果
結論：
GloSensorcAMP實驗在FLIPRTetra系統上運行，進行Gi-和Gs-偶聯的GPCR受體活細胞的高通量篩選應用。
基于 FLIPRTetra系統 的 GloSensor cAMP實驗可以進行Gi-和Gs-偶聯的GPCR受體的動力學檢測而無需在酶標儀中進行終點法檢測。
通過本篇應用文章，我們展示了使用 Glosensor cAMP細胞系和 Glosensor cAMP質粒轉染入內源性受體細胞的實驗方法開發都很方便。
