細胞電轉染實驗效率低的原因可能涉及多個方面，具體如下：

首先，細胞的狀態是影響轉染效率的關鍵因素。如果細胞密度過低或過高，都可能對轉染效率產生負面影響。細胞密度過低時，細胞過于稀疏，轉染試劑難以充分接觸細胞；而細胞密度過高時，轉染試劑與細胞的接觸和吸收可能受阻。此外，如果細胞處于應激狀態或非常規生長狀態，如細胞凋亡或細胞周期靜止期，它們的轉染效率也可能會受到影響。

其次，轉染試劑的選擇和適配性也至關重要。不同類型的細胞需要使用不同的轉染試劑，選擇不合適的轉染試劑可能導致效率低下。同時，轉染試劑與細胞的適配性不佳也可能影響轉染效率，試劑無法很好地與細胞結合，從而影響轉染效果。

再者，轉染的DNA或RNA的質量和濃度也會影響轉染效率。如果質粒DNA的純度不夠高，其中可能含有雜質或其他DNA，這些雜質可能干擾轉染試劑的作用或對細胞產生毒性，導致轉染效率降低。同樣，如果質粒DNA的量不足，轉染試劑與細胞的接觸可能不充分，從而影響轉染效率。

此外，實驗條件和操作方法的合規性也是影響轉染效率的重要因素。如果實驗條件不符合標準，或者操作方法不規范，都可能導致轉染效率下降。

綜上所述，細胞電轉染實驗效率低的原因多種多樣，可能涉及細胞狀態、轉染試劑的選擇和適配性、轉染的DNA或RNA的質量和濃度，以及實驗條件和操作方法的合規性等多個方面。為了提高轉染效率，需要綜合考慮這些因素，并采取相應的措施進行優化。

改進建議

1. 場強要合適

適當的場地強度對于電轉染試驗非常重要。場地強度不宜過高，過高會增加細胞死亡率；不能太低。太低不能增加膜的滲透性或在膜上形成小孔。不同的細胞系有不同的最佳場強值，所轉染細胞系的最佳場強值應在試驗前確定。

2. 細胞狀態要好

在大多數生長期(15代以內，傳代后2d)，一般選擇用于電轉的細胞。由于大多數生長期細胞分裂旺盛，表面結構致密性比穩定期細胞差。電轉后，細胞膜恢復力強，有絲分裂期細胞更容易接受外源DNA.

3. 質粒質量要好

首先要選擇純度高的質粒，DNA／RNA應該是超純的(A260／A280>1．第二，不應含有內毒素，質粒應溶于雙蒸水而非TE緩沖溶液。另外，DNA濃度不宜過高。

4. 選擇合適的電轉染試劑

電擊會對細胞造成一定程度的傷害。應注意轉染試劑的選擇。應選擇威尼德生物科技等具有細胞膜修復成分的電轉染試劑。-E，可以最大限度地減少電擊對細胞的傷害。