注   意 ：正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：                           
α-GC(EC 3.2.1.20)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中，催化水解芳基或烴基與糖基之間的α-糖苷鍵生成葡萄糖，不僅與細胞壁的松弛或加固有關，而且與細胞識別和一些信號分子產生密切相關。

測定原理：
α-GC分解對-硝基苯-α-D吡喃葡萄糖苷生成對-硝基苯酚，后者在400nm有最大吸收峰，通過測定吸光值升高速率來計算α-GC活性。

自備用品：
可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

試劑組成和配制：
提取液：液體50mL×1瓶，4℃保存。
試劑一：粉劑×2瓶，-20℃保存；臨用前每瓶加入10mL蒸餾水，充分溶解備用；用不完的試劑仍-20℃保存。
試劑二：液體25mL×1瓶，4℃保存。
試劑三：液體50mL×1瓶，4℃保存。

粗酶液提取：
1、細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴個）：提取液體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；15000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
2、組織：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。15000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

測定步驟：

• 分光光度計預熱30min以上，調節波長至400nm，蒸餾水調零。
• 加樣表

試劑名稱（μL）	測定管	對照管
試劑一	400
蒸餾水		400
試劑二	500	500
樣本	100	100

充分混勻，放入37℃準確水浴30min后，立即放入95℃水浴5min（蓋緊，以防止水分散失），流水冷卻后
 
充分混勻（以保證濃度不變），8000g，4℃，離心5min，取上清液

上清液	500	500
試劑三	1000	1000

充分混勻，室溫靜置2min后， 400nm處測定吸光值A，計算ΔA=A測定管-A對照管。每個測定管需設一個對照管。
 
α-GC活力計算：
標準條件下測定的回歸方程為y =0.00543x -0.0027；x為標準品濃度（nmol/mL），y為吸光值。
（1）按樣本蛋白濃度計算：
單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘產生1nmol對-硝基苯酚定義為一個酶活力單位。
α-GC活力(nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V反總]÷(V樣×Cpr)÷T
=61.39×(ΔA+0.0027) ÷Cpr
需要另外測定，建議使用本公司BCA蛋白質含量測定試劑盒。
（2）按樣本鮮重計算：
單位的定義：每g組織每分鐘產生1nmol對-硝基苯酚定義為一個酶活力單位。
α-GC活力(nmol/min /g鮮重)＝[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V反總]÷(W×V樣÷V樣總)÷T
=61.39×(ΔA+0.0027) ÷W
（3）按細菌或細胞密度計算：
單位的定義：每1萬個細菌或細胞每分鐘產生1nmol對-硝基苯酚定義為一個酶活力單位。
α-GC活力(nmol/min /10⁴ cell)=[(ΔA+0.0027) ÷0.00543×V反總]÷(500×V樣÷V樣總)÷T
=0.123×(ΔA +0.0027)
V反總：反應體系總體積，1mL；V樣：加入反應體系中樣本體積，0.1mL；V樣總：加入提取液體積，1mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g； 500：細胞或細菌總數，500萬；T：反應時間，30min。